Материалы

Подробности

Дата публикации

МУК 4.2.1774-03

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. 
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Метод микробиологического измерения концентрации клеток 
микроорганизма Penicillium canescens F-832 ВКПМ продуцента ксиланазы
в атмосферном воздухе населенных мест

Дата введения: 2003-12-01

     
     УТВЕРЖДЕНЫ Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации, Первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г.Онищенко 24 октября 2003 г. 
     
     

1. Общие положения и область применения

     
     Настоящие методические указания устанавливают методику проведения микробиологического количественного анализа концентрации клеток штамма Penicillium canescens F-832 ВКПМ продуцента ксиланазы в атмосферном воздухе населенных мест в диапазоне концентраций от 10 до 3000 клеток в 1 м воздуха.
     
     Методические указания разработаны в соответствии с требованиями ГОСТ 17.2.4.02-81 "Охрана природы. Атмосфера. Общие требования к методам определения загрязняющих веществ".
     
     Методические указания предназначены для применения в лабораториях предприятий, организаций и учреждений, аккредитованных в установленном порядке на право проведения микробиологических исследований.
     
     

2. Характеристика штамма-продуцента ксиланазы

     
     Микроорганизм Penicillium canescens F-832 является продуцентом фермента ксиланазы. Культура образует цепочки спор обычно прямые с гладкой оболочкой. Штамм растет на различных агаризованных и жидких средах. На сусло-агаре на 3 сутки роста при температуре 30 °С образует округлые радиально-складчатые морщинистые колонии с кремовым или сероватым налетом, диаметром 2-3 мм. На 4-5 сутки инкубации размеры колонии достигают 5-7 мм, конфигурация и складчатость колоний не изменяется, образуется воздушный мицелий со спорами бежевато-серого цвета, подошва колоний оранжево-коричневая.
     
     Штамм устойчив практически ко всем широко известным антибиотикам.
     
     ПДК штамма в атмосферном воздухе 200 кл/м, пометка А.
     
     

3. Пределы измерений

     
     Методика обеспечивает выполнения измерений количества клеток продуцента ксиланазы в атмосферном воздухе населенных мест в диапазоне концентраций от 10 до 3000 клеток в 1 мвоздуха при доверительной вероятности 0,95.
     
     

4. Метод измерений

     
     Метод основан на аспирации из воздуха клеток продуцента ксиланазы на поверхность плотной питательной среды и подсчета выросших колоний по типичным морфологическим признакам.
     
     Косвенный метод измерения концентрации штамма-продуцента основан на аспирации из воздуха микробных клеток на поверхность плотной питательной селективной среды и подсчета выросших колоний по зонам просветления, образующихся вокруг каждой колонии штамма, как результат продукции ксиланазы на среде с окрашенной целлюлозой.
     
     

5. Средства измерений, вспомогательные устройства, реактивы и материалы

     
     При выполнении измерений применяют следующие средства измерений, вспомогательные устройства и материалы.
     

5.1. Средства измерений, вспомогательные устройства, материалы

     
5.2. Реактивы, растворы

     
6. Требования безопасности

     
     При выполнении измерений концентрации клеток продуцента ксиланазы в атмосферном воздухе населенных мест соблюдают следующие требования:
     
     6.1. Правила техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.1.005-88.
     
     6.2. Электробезопасность при работе с электроустановками по ГОСТ 12.1.019-79 и инструкции по эксплуатации прибора.
     
     6.3. "Инструкции по устройству, требованиям безопасности и личной гигиены при работе в микробиологических лабораториях предприятий микробиологической промышленности" (1977).
     
     6.4. Все виды работ с реактивами проводят только в вытяжном шкафу при работающей вентиляции, работа с биологическим материалом осуществляется в боксе, оборудованном бактерицидными лампами.
     
     

7. Требования к квалификации операторов

     
     К выполнению измерений и обработке их результатов допускают лиц с высшим или средним специальным образованием, прошедших соответствующую подготовку и имеющих навыки работы в области микробиологических исследований.
     
     

8. Условия измерений

     
     Процессы приготовления растворов и подготовки проб к анализу проводят в нормальных условиях при температуре воздуха (20±5 °С), атмосферном давлении 630-800 мм рт.ст. и влажности воздуха не более 80%.
     
     

9. Проведение измерения

     
9.1. Условия отбора проб воздуха

     
     Для определения продуцента ксиланазы воздух аспирируют при помощи аппарата Кротова со скоростью 10 л/мин на поверхность плотной питательной среды. Время аспирации воздуха (5-20 мин) зависит от предполагаемой концентрации клеток продуцента.
     
     Аппарат Кротова перед каждым отбором пробы воздуха тщательно протирают спиртом. Особенно тщательно обрабатывают поверхность подвижного диска и внутреннюю стенку прибора, наружную и внутреннюю стенку крышки. На подвижной диск устанавливают подготовленную чашку Петри со средой, одновременно снимая с нее крышку. Прибор закрывают. Соприкосновение крышки прибора со средой недопустимо. После отбора пробы воздуха и остановки диска прибор открывают, быстро снимают чашку Петри и закрывают крышкой от данной чашки. На дне чашки Петри стеклографом отмечают точку контроля, время аспирации и дату отбора пробы.
     

9.2. Выполнение анализа

     
     Метод предполагает учет количества типичных по морфологическим признакам колоний, выросших на 3-5 сутки после посева воздуха. Прямой метод позволяет учитывать на чашке до 200 колоний продуцента.
     
     Сусло-агар расплавляют, остужают до 60 °С, добавляют свежеприготовленный в стерильной дистиллированной воде раствор одного из антибиотиков из расчета 50 мкл на 1 мл среды (для подавления посторонней бактериальной микрофлоры) и нистатина (10 мкг/мл для подавления грибковой флоры), тщательно перемешивают и разливают по 10-15 мл в стеклянные чашки Петри на горизонтальной поверхности. Чашки с застывшей средой помещают в термостат на сутки при температуре 37 °С, после чего проросшие чашки бракуют, стерильные чашки используют для контроля воздуха.
     
     При выполнении анализа воздуха косвенным методом селективную среду расплавляют, остужают до 60 °С, добавляют 50 мг/л бенгальского розового, растворенного в 1 мл диметилсульфоксида, тщательно перемешивают и разливают по 10 мл в стеклянные чашки Петри на горизонтальной поверхности. Бенгальский розовый предназначен для специфического окрашивания целлюлозы и для ограничения разрастания колоний на чашках.
     
     После отбора проб воздуха чашки Петри помещают в термостат на 30 °С. Через 72 часа производят подсчет выросших типичных колоний продуцента. При необходимости культуру подвергают микроскопированию.
     
     

10. Вычисление результатов измерения

     
     Расчет концентрации клеток продуцента в пересчете на 1 м воздуха производят по формуле:
     

 кл/м,

где  - концентрация клеток продуцента в воздухе; 
     
      - количество зон вокруг колоний продуцента, выросших на чашке;
     
     1000 - коэффициент пересчета на 1 м воздуха;
     
      - объем воздуха, л (произведение скорости на время аспирации).

11. Оформление результатов измерений

     Результаты измерений оформляют протоколом по форме.

Протокол N
количественного микробиологического анализа штамма 
Penicillium canescens F-832 ВКПМ продуцента ксиланазы в атмосферном воздухе населенных мест

Результаты микробиологического анализа

     Ответственный исполнитель 
     
     Научный руководитель
     

Список литературы

     
     1. Руководство по контролю загрязнения атмосферы: РД 52.04.186-89. М., 1991. 693 с. 
     
     2. ГОСТ Р 8.563-96. ГСИ "Методики выполнения измерений". 
     
     3. ГОСТ 17.2.4.02-81 "Охрана природы. Атмосфера. Общие требования к методам определения загрязняющих веществ". М.: Изд-во стандартов, 1981. 3 с.
     

          
Текст документа сверен по:
официальное издание 
Методы контроля. Микробиологические факторы.

Методические указания: [Сборник] 
(МУК 4.2.1767-03 - МУК 4.2.1775-03). - 
М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора 
Минздрава России, 2004